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Test Plantaire (Méthode selon Hargreaves et al.)

Référence : VI-37370

Le « Plantar test » ou « Hargreaves » (méthode décrite par K.Hargreaves) mesure automatiquement le seuil nociceptif d’un rongeur dont la voute plantaire est soumise à un stimulus thermique infrarouge d’intensité réglable.

Description

 

Le « Plantar test » ou « Hargreaves » (méthode décrite par K.Hargreaves) mesure automatiquement le seuil nociceptif d’un rongeur dont la voute plantaire est soumise à un stimulus thermique infrarouge.

 

Le Plantar test Pour rats et souris est le fruit de l’amélioration de trois générations d’instruments. Conçu en étroite collaboration avec le professeur Ken Hargreaves, il dispose des meilleures fonctionnalités et a fait l’objet de centaines de citations méthode attestant de sa robustesse.

 

  • Opérateur indépendant
  • Emet dans l’infra-rouge
  • Vérifiable ( radiamètre)
  • Rat et souris
  • Des centaines de citations

 

-Viser la surface plantaire avec la source de chaleur IR et appuyer sur le bouton déclencheur !- … la latence de retrait de la patte et l’intensité infrarouge correspondante sont les deux paramètres enregistrés automatiquement (c.-à-d. pas de relevé manuel, comme avec d’autres modèles disponibles sur le marché !).

 

Ugo Basile a mis au point et commercialisé le Plantar test, il est automatisé depuis l’origine !

 

Le test plantaire représente une avancée remarquable dans la méthodologie des tests aiguë de douleur, car il combine les meilleures caractéristiques de toutes les autres méthodes de mesure de la sensibilité à la douleur thermique. La principale caractéristique spécifique au test plantaireest que  l’animal n’est pas contraint durant les mesures. Contrairement à d’autres modèles proposés, la latence du temps de retrait est enregistrée automatiquement dans la mémoire de l’instrument par un capteur à fibre optique sans avoir à se concentrer sur l’observation expérimentale de l’animal pour arrêter un chronomètre. On évite ainsi un biais expérimental indésirable.

 

Le Plantar test Hargreaves se compose d’une source de lumière Infrarouge déportée de l’unité principale et placée sous une vitre sur laquelle l’opérateur dépose ses animaux (rats, souris), voir photo. Une enceinte en Perspex définit l’espace dans lequel l’animal peut circuler. Il est divisé en trois compartiments, ce qui aide l’opérateur à effectuer un travail de criblage rapide : jusqu’à 12 animaux peuvent être testés en une même session.

 

Particularité de notre modèle, la source de chaleur est émise dans l’Infra-Rouge, longueur d’onde qui est invisible de l’animal. Ce qui évite une anticipation de la réponse comme observé avec d’autre modèles.
Un circuit de rétroaction par fibre optique détecte les faux réflexes positifs. Les données apparaissent sur l’interface graphique et peuvent être exportées vers une clé USB ou vers l’ordinateur via une connexion câble USB.
L’interface permet de personnaliser ses listes de sujets et affecter la mesure à un groupe prédéfini.

La clé USB  de transfert est livré avec l’instrument.

 

Dans une configuration BPL, les données peuvent être imprimées sur l’imprimante statistique en option, ou sur une mini-imprimante.

 

Stimulation orofaciale possible avec l’utilisation des boites de contention DURHAM 37100, contactez-nous pour plus d’informations

Données techniques

Weight 13 kg
Dimensions 85 × 40 × 35 cm
Mesure

Latence de retrait mesurée automatiquement par un capteur à fibre optique. Pas d'erreur de recopie, mesure précise, variabilité réduite

Logiciel et clé USB inclus

Fonctionnement autonome résultats généra au format CSV sur clé USB

Cages modulables

Optimiser votre espace de travail de 3 a 12 animaux selon l'espèce et la taille

Calibration

Flux infrarouge Calibré en usine. Assurez vous d'avoir la même stimulation mois après mois grâce à notre radiamètre optionnel

Etalonnage

Tableau d'étalonnage fournit. Résultats donnés en grandeurs physiques comparable avec d'autres laboratoires

Alimentation

Universelle 85-264 VAC, 50-60Hz

Contrôle

Écran tactile résistif

Impression

Imprimante optionnelle ou mini imprimante

Démarrage

A partir du stimulateur ambidextre ou via la face avant

Intensité I.R

Ajustable de 1-99 par pas de 1 avec table de correspondance en mW/cm2

Temps de latence

Affiché avec une résolution de 0,1 sec.

CUT-Off

Réglable Via Écran tactile

Température de fonctionnement

10° à 40° C

Bruit

Négligeable

Publications

  • L. Mannelli et alia: “Effects of the Neutrophil Elastase Inhibitor EL-17 in Rat Adjuvant-Induced Arthritis” Rheumatology 10.1093, 2016
  • S. Castany et alia: “The Antinociceptive Effects of a δ-Opioid Receptor Agonist In mice with Painful Diabetic Neuropathy: Involvement of Heme Oxygenase 1“ Neuroscience Letters 614: 49-54, 2016
  • Z.Z. Huang et alia “Mir-500-Mediated GAD67 Downregulation Contributes to Neuropathic Pain” J. Neurosci 36(23): 6321-6331, 2016
  • T.A. Nees et alia: “Early-onset treadmill training reduces mechanical allo-dynia and modulates calcitonin gene-related peptide fiber density in lam-ina III/IV in a mouse model of spinal cord contusion injury” Pain 157(3): 687-697, 2016
  • V. Carozzi et alia: “Chemotherapy-Induced Peripheral Neurotoxicity in Immune-Deficient Mice: New Useful Ready-to-Use Animal Models” Exp. Neurology 264: 92-102, 2015
  • V. Vacca et alia: “Botulinum Toxin A Increases Analgesic Effects of Mor-phine, Counters Development of Morphine Tolerance and Modulates Glia Activation and μ Opioid Receptor Expression in Neuropathic Mice” Brain, Behav and Immunity 32: 40-50, 2013
  • A. Finley et alia: “Sphingosine 1-Phosphate Mediates Hyperalgesia via a Neutrophil-Dependent Mechanism” PLoS ONE 8(1): e55255, 2013
  • J. Donnerer et alia: “The Pain Pathway in the Rat following Noxious Ther-mal Stimulation: Effect of Morphine on pERK1/2 and TRPV1 at the Dorsal Horn Level, and on Hyperalgesia” Pharmacology 92: 32-38, 2013
  • M. Arai et alia: “The miRNA and mRNA Changes in Rat Hippocampi after Chronic Constriction Injury” Pain Medicine 14 (5): 720-729, 2013
  • P.J. Austin et alia: “G. Chronic Constriction of the Sciatic Nerve and Pain Hypersensitivity Testing in Rats” JoVE 61, e3393, doi:10.3791/3393, 2012 http://www.jove.com/video
  • H.N. Kim et alia: “Electroacupuncture Inhibits Phosphorylation of Spinal Phosphatidylinositol 3-kinase/Akt in a Carrageenan-induced Inflammatory Rat Model” Brain Res. Bulletin 87 (2-3): 199-204, 2012
  • D. Piomelli et alia: ”Anandamide suppresses pain initiation through a pe-ripheral endocannabinoid mechanism” Nature NSC, 2010
  • C.B. Vaegter et alia: ”Sortilin Associates with Trk Receptors to Enhance Anterograde Transport and Neurotrophin Signaling” Nature NSC, 2010
  • O. Ortiz et alia: “Associative Learning and CA3–CA1 Synaptic Plasticity Are Impaired in D1R Null, Drd1a-/- Mice and in Hippocampal siRNA Si-lenced Drd1a Mice” J. Neuroscience 30 (37): 12288-12300, 2010
  • M. Rosemann et alia: “Microphthalmia, Parkinsonism, and Enhanced No-ciception in Pitx3416insG Mice” Mamm Genome 21: 12-27, 2010

Durham Holders for Orofacial Stimulation

  • F.G. Garrett, P.L. Durham et alia: “Validation of a Novel Rat-Holding Device for studying heat- and mechanical-Evoked Trigemi¬nal Nocifensive Be-havioral Responses” J. Orofacial Pain, 26 (4): 336- 344, 2012
  • F.G. Garrett, P.L. Durham et alia: “Development of a novel device for measuring withdrawal latency by thermal stimulation in rodent facial pain models using the Hargreaves Plantar Apparatus” Poster presented at SFN 2010

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