Cadre (Table) stéréotaxique à affichage digital pour rats et souris
Ce cadre stéréotaxique pour rats et/ou souris combine toutes les caractéristiques d’une table stéréotaxique standard lestée en U. Avec l’ajout de trois transducteurs de déplacement et d’un boitier d’affichage déporté comportant 3 écrans LCD l’opérateur a une présentation digital en temps réel du positionnement tridimensionnel avec une résolution de 10 micro-mètres sur les trois axes.
Choisissez votre modèle parmi les configurations du menu déroulant :
Affichage digital des déplacement tridimensionnels-Une plus grande précision- Un gain de temps !
Cet instrument combine toutes les caractéristiques d’une la table stéréotaxique standard avec support en U et l’ajout de trois transducteurs de déplacement digitaux reliés à un boitier d’affichage déporté. Le Boitier d’affichage intègre 3 écrans LCD compacts. Ce boitier permet de visualiser instantanément le positionnement du bras dans les trois axes et avec une résolution de 10 μmètres.
Avec les accessoires adéquats, ce cadre peut être utilisé avec d’autres espèces, la souris notamment. Pour des injections stéréotaxique souris
Barres d’oreille, adaptateur de gueule et porte accessoire sont à choisir séparément:
La fonction RAZ (remise à zéro) simplifie le positionnement. Pour répondre aux contraintes de bruit électro-magnétique liés aux expériences d’électrophysiologie, cet instrument utilise des piles ou des batterie rechargeables AAA en lieu et place d’une alimentation stabilisée. Ceci réduit considérablement le bruit électronique et réduit la place que prend l’équipement sur la paillasse.
Vos tables stéréotaxiques basique avec des verniers à lecture analogique ( gravure) peuvent être mise à niveau avec un kit comprenant les capteurs et l’afficheur ( sur devis).
Exemples d’adaptateurs:
VI-68077 Adaptateur de gueule souris avec masque d’anesthésieVI-68030 Adaptateur souris et rat néonat. en DelrinVI-68078 Adaptateur de gueule rat avec masque d’anesthésie
VI-68055: pince museau pour souris standardVI-68021 Adaptateur de gueule/pince museau rats standard avec barres d’oreille 18 ou 45 °
Remarque:
Cette table stéréotaxique est livrée de base avec un micro-manipulateur à 3 axes (gauche ou droite). Le crâne est fixé grâce à un accessoire de maintien de la gueule et des barres d’oreilles fixés sur un support massif en U. Pour le rat les barres standard ont des embouts adaptés et inclinés à 18°.
Données techniques
Weight
12 kg
Dimensions
40 × 50 × 40 cm
Plage de déplacement par axe
80mm
Résolution
10 micro-mètres ( 0,01 mm)
Espèces
avec les accessoires de préhension adaptés: Rat-souris- cochon d'inde oiseaux etc
In vivo fiber photometry of neural activity in response to optogenetically manipulated inputs in freely moving mice
Liang Li et al. Journal of Innovative Optical Health Sciences. 2017
In order to explore the role of a specific gene/protein in the specific segment of spinal cord, the technique of intraspinal injection is particularly used to deliver viral vectors targeting the specific gene/protein. These viral vectors can knockdown or overexpress the specific gene/protein in specific cells (glial cells or neurons). In this protocol, lentivirus containing shRNA for CXCL13 were injected into dorsal horn of the spinal lumbar enlargement segment (Jiang et al., 2016). This technique allows the study of the role of CXCL13 in the ipsilateral dorsal horn in neuropathic pain without affecting DRG or contralateral dorsal horn.
Microinjection of Virus into Lumbar Enlargement of Spinal Dorsal Horn in Mice
Zhi-Jun Zhang et al. Bio-protocol. 2016
In vivo fiber photometry is a powerful technique to analyze the dynamics of population neurons during functional study of neuroscience. Here, we introduced a detailed protocol for fiber photometry-based calcium recording in freely moving mice, covering from virus injection, fiber stub insertion, optogenetical stimulation to data procurement and analysis. Furthermore, we applied this protocol to explore neuronal activity of mice lateral-posterior (LP) thalamic nucleus in response to optogenetical stimulation of primary visual cortex (V1) neurons, and explore axon clusters activity of optogenetically evoked V1 neurons. Final confirmation of virus-based protein expression in V1 and precise fiber insertion indicated that the surgery procedure of this protocol is reliable for functional calcium recording. The scripts for data analysis and some tips in our protocol are provided in details. Together, this protocol is simple, low-cost, and effective for neuronal activity detection by fiber photometry, which will help neuroscience researchers to carry out functional and behavioral study in vivo.
